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MICH TLX DNA-seq kit (illumina Compatible)

簡(jiǎn)要描述:Mich TLX DNA-seg kit (illumina Compatible) 是為 illumina 平臺設計的 DNA 文庫準備試劑盒,適用于起始量 1 ng-200 ng 的 DNA 樣本,試劑盒經(jīng)過(guò)精心設計和優(yōu)化,能夠快速構建文庫(2.5-3.5小時(shí)),有高效的文庫轉化率與擴增效率,已經(jīng)經(jīng)過(guò)多樣本驗證可獲得優(yōu)異的文庫與測序數據,可用于石蠟包埋組織 DNA 樣本建庫。

  • 產(chǎn)品型號:NGS 0602-96
  • 廠(chǎng)商性質(zhì):生產(chǎn)廠(chǎng)家
  • 更新時(shí)間:2024-06-28
  • 訪(fǎng)  問(wèn)  量:470

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詳細介紹

品牌其他品牌規格96 rxns
供貨周期現貨應用領(lǐng)域生物產(chǎn)業(yè),綜合

產(chǎn)品描述

Mich TLX DNA-seg kit (illumina Compatible) 是為 illumina 平臺設計的 DNA 文庫準備試劑盒,適用于起始量 1 ng-200 ng 的 DNA 樣本,試劑盒經(jīng)過(guò)精心設計和優(yōu)化,能夠快速構建文庫(2.5-3.5小時(shí)),有高效的文庫轉化率與擴增效率,已經(jīng)經(jīng)過(guò)多樣本驗證可獲得優(yōu)異的文庫與測序數據,可用于石蠟包埋組織 DNA 樣本建庫。試劑盒包含了 DNA 片段化和末端修復加 A尾的預混液、連接預混液、高保真擴增預混液、短接頭和含有 INDEX 的 PCR 引物(可以根據客戶(hù)要求進(jìn)行選配)。

(注意: 本試劑盒不可直接用不帶 INDEX 的引物進(jìn)行 PCR 反應)。

產(chǎn)品信息


產(chǎn)品貨號名稱(chēng)規格
NGS 0602-8MICH TLX DNA-seq kit (illumina Compatible)8 rxns
NGS 0602-24MICH TLX DNA-seq kit (illumina Compatible)24 rxns
NGS 0602-96MICH TLX DNA-seq kit (illumina Compatible)96 rxns


產(chǎn)品組分

名稱(chēng)體積(NGS 0602-8)體積(NGS 0602-24)體積(NGS 0602-96)
TLX Buffer Mix38 μL112 μL448 μL
TLX Enzyme Mix30 μL89 μL356 μL
TLX ligase Enzyme20 μL56 μL224 μL
TLX ligase Buffer76 μL224 μL896 μL
TLX Adapter for ILM20 μL56 μL224 μL
PCR Master Mix96 μL280 μL1120 μL

使用流程



注意事項

一、關(guān)于操作

  1. 請穿實(shí)驗服并戴一次性手套進(jìn)行實(shí)驗。

  2. 使用前請將試劑盒各組分置于室溫解凍。解凍后充分混勻,短暫離心后置于冰上待用。

  3. 混勻時(shí)請輕輕吹打或輕輕振蕩,劇烈振蕩可能會(huì )造成文庫產(chǎn)出下降。

  4. 為避免樣品交叉污染,推薦使用帶濾芯的一次性槍頭。

  5. 推薦在帶熱蓋的 PCR 儀中進(jìn)行各步驟反應,使用前應預熱 PCR 儀至反應溫度附近請在潔凈的實(shí)驗環(huán)境下實(shí)驗,避免污染。

二、TLX Adapter for ILM說(shuō)明

  1. TLX Adapter for ILM 采用短接頭模式。

  2. 接頭濃度: 15 uM;直接用于相應建庫試劑盒連接體系里即可。

  3. -20°C保存,使用前提前融化,盡量低溫融化,避免在超過(guò) 30°的環(huán)境中融化。

  4. 建庫推薦使用量: 常規 DNA投入量 100-200 ng,2uL/rxns; 其他 DNA 投入量需要適當調整接頭使用量。

三、關(guān)于磁珠純化與分選

  1. DNA 片段選擇步驟可在接頭連接后或文庫擴增后進(jìn)行。

  2. 當Input DNA質(zhì)量> 50 ng,建議在接頭連接后分選;如Input DNA 質(zhì)量<50 ng,可在文庫擴增后進(jìn)行分選。

  3. TLX Ligase Buffer 包含高濃度的 PEG,對雙輪磁珠分選產(chǎn)生顯著(zhù)影響。因此,當在接頭連接后進(jìn)行片段選擇,須先進(jìn)行純化步驟,再進(jìn)行雙輪分選步驟,如在文庫擴增后進(jìn)行片段選擇,可直接進(jìn)行雙輪磁珠分選步驟。

  4. 磁珠使用前應先平衡至室溫,并混勻再使用,否則會(huì )導致得率下降。

  5. 80%乙醇應現用現配,否則將影響回收效率。

  6. 6進(jìn)行片段選擇時(shí),初始樣品體積應盡量> 100 uL,初始樣本體積越大,片段選擇效果越好。

四、關(guān)于文庫擴增




五、關(guān)于文庫質(zhì)檢

  1. 通常情況下,構建好的文庫可通過(guò)長(cháng)度分布檢測和濃度檢測來(lái)進(jìn)行質(zhì)量評價(jià)。

  2. 文庫濃度檢測可使用:基于雙鏈 DNA熒光染料的方法,如Qubit或 gPCR 絕對定量的方法。

  3. 文庫長(cháng)度分布檢測,可通過(guò) Agilent Bioanalvzer 2100 等基于毛細管電泳或微控流原理的設備進(jìn)行檢測。






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